Ciência do Solo
Instruções para Coleta e Remessa de Amostras (Serviço não oferecido pelo Departamento)
AMOSTRAGEM DE SOLOS
A análise de solo é essencial para avaliar sua fertilidade, pois através da interpretação dos resultados é possível realizar manejo químico do solo de maneira eficiente e econômica, já que determina o estoque de nutrientes no solo e os limitantes químicos no momento anterior ao plantio, possibilitando o desenvolvimento de um programa de correção e adubação, bem como monitorar e avaliar periodicamente o balanço dos nutrientes no solo.
Para se obter uma análise de solo confiável é necessário realizar primeiramente uma amostragem adequada do solo, como descrito abaixo:
Seleção de amostras
Os solos são normalmente heterogêneos. Por essa razão deve-se dividir a propriedade em glebas uniformes, levando em consideração os seguintes detalhes: cor do solo; posição no relevo; textura; histórico da área (culturas, calagens, adubações, etc); erosão e drenagem; cultura atual ou cobertura vegetal. Manchas no terreno não devem fazer parte da amostra, ou devem ser amostradas separadamente, se o tamanho justificar. Assim, depois de separadas as áreas uniformes, se necessário, é feita a subdivisão de cada uma, de forma que seu tamanho máximo não ultrapasse 10 hectares.
Figura 1 - Representação esquemática de divisão de uma propriedade em glebas ou talhões a serem amostrados.
Quando Coletar
As amostras deverão ser coletadas alguns meses antes do plantio. O ideal é recolher-lhas no início da estação seca (outono/ inverno), respeitando no caso das culturas perenes cerca de 2 (dois) meses após o ultimo parcelamento de adubação.
Tipos de amostra
Amostra simples - É uma pequena quantidade de terra retirada ao acaso em área ou gleba homogênea. Não é recomendada para avaliação da fertilidade do solo, porém pode ser utilizada para fins de classificação de solo (por tradagem ou trincheira).
Amostra composta - É a reunião de várias amostras simples (sub-amostras) colhidas ao acaso dentro de área ou gleba uniforme, que são misturadas para representá-la melhor. Em geral, sempre devem ser coletadas pelo menos 15 (quinze) amostras simples para se fazer uma amostra composta. É a metodologia adequada para avaliação da fertilidade do solo.
Coleta da amostra de solo
Uma vez dividida a propriedade em áreas ou glebas uniformes e após correta identificação de cada gleba, será feita a coleta da amostra. Caminhando em zigue-zague de forma a percorrer toda a área ao acaso, serão coletadas porções de solo de 12 a 20 locais diferentes.
O solo coletado de cada um desses locais (sub-amostras) deverá ser colocado em recipiente limpo, devendo ser bem misturado e dela coletado uma amostra de cerca de meio quilo, que serão condicionados em sacos plásticos devidamente identificados. No caso de amostragens realizadas com equipamentos adequados como trados ou sondas, os quais retiram pequenas porções de terra (mesmo volume pós sub-amostra) e a mesma profundidade, as amostras podem ser colocadas diretamente no saco plástico que será remetido ao laboratório de análises. Essa amostra composta representará uma área ou gleba homogênea da propriedade.
Durante a coleta, deve-se evitar amostrar em locais próximos a casas, brejos, sucos de erosão, formigueiros, caminhos, etc.
Onde retirar a amostra
- Culturas Anuais: metade das amostras na linha misturada com metade das amostras da entrelinha.
- Culturas Perenes: na projeção da copa da entrelinha das plantas.
- Cana-de-Açúcar: em culturas já implantadas retirar as amostras, cerca de um palmo da linha.
Profundidade de Amostragem
Realizar a amostragem em duas duas profundidades: 0-20 e 20-40 cm ou 0-25 cm e 25-50 cm.
Ferramentas para amostragem
Várias ferramentas são utilizadas para retiradas das amostras:
-Trado de rosca, trado de caneca, trado holandês, sonda, trado tubular.
Figura 2 - Ferramentas mais utilizadas para retirar amostras de solos.
Identificação e envio das amostras
Transfira a amostra coletada para um saco plástico limpo e sem contaminantes. Este recipiente deverá estar bem identificado, incluindo informações como o nome da propriedade, a profundidade de amostragem e a data da coleta, por exemplo. Logo após a coleta, fechar o saco plástico e encaminhar para o Laboratório
ANÁLISE MICROBIOLÓGICA
Para a determinação de parâmetros biológicos as amostras de solo devem ser coletadas com instrumental esterilizado ou desinfestado. A terra com umidade natural deve ser acondicionada em sacos plásticos firmemente amarrados e conservados em geladeira. Deve-se levar as amostras para o laboratório, preferencialmente dentro de 24 horas ou o mais rápido possível.
Amostras de solo para quantificação de esporos de fungos micorrízicos arbusculares serão mais bem preservadas se o solo estiver bem seco.
Amostras de raízes ou de outras partes de plantas devem ser extraídas, lavadas com água corrente e deixadas para uma secagem rápida à sombra. Depois incluir em sacos plásticos bem amarrados e manter em geladeira.
Remessa
As amostras devem ser enviadas rapidamente ao laboratório após a sua coleta, de preferência acondicionadas em geladeira e levadas através de um portador.
Pelo correio recomenda-se usar caixas de isopor para evitar aquecimento.
TECIDO VEGETAL (*)
Diagnose foliar
A diagnose foliar é um método de avaliação do estado nutricional das culturas em que se analisam determinadas folhas em períodos definidos da vida da planta. O motivo pelo qual analisam-se as folhas é conhecido: elas são os órgãos que, como regra geral, refletem melhor o estado nutricional, isto é, respondem mais às variações no suprimento de M, seja pelo solo, seja pelo adubo.
A diagnose foliar consiste, pois, em analisar-se o solo usando a planta como solução extratora.
Prática
A diagnose foliar tem várias aplicações:
a) avaliação do estado nutricional;
b) identificação de deficiências que provocam sintomas semelhantes, dificultando ou
impossibilitando a diagnose visual;
c) avaliação da necessidade de adubos ou ajustes no programa de adubação.
Amostragem
A diagnose foliar exige um rigor na amostragem maior que o aceito na análise de solos: as chamadas classes de fertilidade de solo, isto é, faixas de variação no teor disponível consideradas "baixa", "média" ou "alta", admitem às vezes variações da ordem de 100% quando usadas na determinação das doses de adubos a usar. Se é verdade que a folha é o órgão que reflete melhor o estado nutricional, não é qualquer folha que o faz: como regra colhe-se para análise folha recém-madura numa época dada da vida da planta.
As vezes tem-se que usar uma solução de compromisso na época da amostragem, colhendo as folhas antes ou depois, momento em que é máxima a diferença entre teores encontrados nas folhas das plantas altamente produtivas e as outras com colheita potencial média ou baixa: isto se faz para ter-se tempo de corrigir a deficiência no próprio ano agrícola, sem ter que esperar pelo seguinte.
Coleta de amostras para algumas culturas
| Cultura | Época | Tipo de folha | No.de folhas/ha |
| Algodoeiro Herbáceo | Início do florescimento | Limbo de folhas adjacentes às "maças" | 30 |
Arbóreo |
Início do florescimento |
Folhas recém-maduras |
30 |
Arroz |
Meio do perfilhamento |
Folha Y (posição ocupada em relação à folha mais nova desenrolada acima) |
50 |
Bananeira |
Florescimento |
Folha III (abaixo e opostas às flores); porção mediana (10cm largura) clorofilada |
-- |
Batatinha |
Meio do ciclo, 35-45 dias após emergência |
Pecíolo da 4ª folha a partir da ponta |
30 |
Cafeeiro |
Primavera-verão |
3º e 4º pares de folhas, a partir da ponta, ramos a meia-altura e produtivos |
30 |
Cana-de-açúcar |
Quatro meses após brotação |
Folha + 3; folha +1 = com primeira lígula (= região de inser'vão da bainha do colmo) Terço mediano, excluída a nervura principal |
20-30 por talhão uniforme |
Cenoura |
Meio do ciclo |
Nervura principal da folha recém-madura |
40 |
Citros |
Verão |
Folhas do ciclo da primavera de ramos frutíferos, frutos com 2-4 cm de diâmetro, 3ª ou 4ª folha a partir do fruto |
20 |
Eucalipto |
Verão-outono |
Recém-maduras, ramos primários |
18 |
Feijões |
Início da floração |
Primeira folha amadurecida a partir da ponta do ramo |
30 |
Figo |
Primavera (florescimento) |
Folhas mais novas totalmente expandidas, ao sol, ramos sem frutos |
40 |
Goiabeira |
Um mês depois de terminar o crescimento do ramos |
4º par, ramos terminais sem frutos |
30 |
Gramíneas |
Primavera-verão |
Recém-maduras ou toda a parte aérea |
30 |
Leguminosas |
Primavera-verão |
Florescimento |
30 |
Macieira |
Primavera-verão |
Inteiras, com pecíolos, na parte mediana de ramos do ano |
100 folhas de 25 plantas |
Mamoeiro |
Florescimento |
Folha "F"- na axila coma primeira flor completamente expandida |
18 |
Mandioca |
3-4 meses de idade |
Primeira folha recém-madura |
30 |
Milho |
Aparecimento da inflorescência feminina (cabelo) |
Folha oposta e abaixo da espiga |
30 |
Pessegueiro |
Verão |
Recém-amadurecidas, do crescimento do ano |
100 folhas de 25 plantas |
Pinus |
Verão-outono |
Recém-maduras, primárias |
18 |
Repolho |
Formação da cabeça |
Nervura principal da folha envolvente |
40 |
Seringueira |
Verão-outono |
3-4 folhas recém maduras, a sombra, na base do terço superior da copa |
6 |
Soja |
Fim do florescimento |
1ª folha amadurecida a partir da ponta do ramo, pecíolo excluído |
30 |
Tomateiro |
Florescimento pleno ou primeiro fruto maduro |
4ª folha a partir da ponta |
40 |
Trigo |
Início do florescimento |
1ª a 4ª folhas a contar da ponta |
30 |
Videira |
Fim do florescimento |
Na base do primeiro cacho |
30-60 |
→ Outras culturas procurar o Departamento de Solos e Nutrição de Plantas ou a bibliografia.
_________________
(*) MALAVOLTA, E.; VITTI, G.C. & OLIVEIRA, S.A., Avaliação do Estado Nutricional das Plantas
(2a. edição), Potafos, Piracicaba, SP. 1997, 319p.
Procedimentos para coleta de folhas de algumas culturas |
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Café (Casale, 1999):Para o cafeeiro recomenda-se adotar o seguinte critério:1) Realizar a amostragem no verão (dezembro/janeiro), estando as plantas com frutos com tamanho de “chumbinho”;
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SojaPara a cultura da soja recomenda-se coletar a 3ª folha (3º trifólio desenvolvido), com pecíolo, conforme pode ser observado na figura abaixo.
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Algodão
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Coleta-se o limbo da 5ª folha da haste principal. Não considerar as folhas do capulho. |
Faixa de teores adequados de macronutrientes para algumas culturas |
||||||
Cultura |
N |
P |
K |
Ca |
Mg |
S |
------------------------------ g.kg-1 ----------------------------- |
||||||
Café1 |
26-32 |
1,2-2,0 |
18-25 |
10-15 |
3,0-5,0 |
1,5-2,0 |
Citros2 |
23-27 |
1,2-1,6 |
10-15 |
35-45 |
2,5-4,0 |
2,0-3,0 |
Manga3 |
12-14 |
1,0-1,5 |
6,5-10 |
28-40 |
2,5-5,0 |
0,9-1,8 |
Goiaba4 |
22-26 |
1,5-1,9 |
17-20 |
11-15 |
2,5-3,5 |
3,0-3,5 |
Cana de açúcar5 |
18-25 |
1,5-3,0 |
10-16 |
2,0-8,0 |
1,0-3,0 |
1,5-3,0 |
Colonião |
15-25 |
1,0-3,0 |
15-30 |
3-8 |
1,5-5,0 |
1,0-3,0 |
Napier |
15-25 |
1,0-3,0 |
15-30 |
3-8 |
1,5-4,0 |
1,0-3,0 |
Coast-cross |
15-25 |
1,5-3,0 |
15-30 |
3-8 |
2,0-4,0 |
1,0-3,0 |
Tifton |
20-26 |
1,5-3,0 |
15-30 |
3-8 |
1,5-4,0 |
1,5-3,0 |
B. Brizantha |
13-20 |
0,8-3,0 |
12-30 |
3-6 |
1,5-4,0 |
0,8-2,5 |
Andropogon |
12-25 |
1,1-3,0 |
12-25 |
2-6 |
1,5-4,0 |
0,8-2,5 |
B. decumbens |
12-20 |
0,8-3,0 |
12-25 |
2-6 |
1,5-4,0 |
0,8-2,5 |
Batatais |
12-22 |
1,0-3,0 |
12-25 |
3-6 |
2,0-4,0 |
0,8-2,5 |
Gordura |
12-22 |
1,0-3,0 |
12-30 |
3-7 |
1,5-4,0 |
0,8-2,5 |
Soja perene |
20-40 |
1,5-3,0 |
12-30 |
5-20 |
2,0-5,0 |
1,5-3,0 |
Leucena |
20-48 |
1,5-3,0 |
13-30 |
5-20 |
2,0-4,0 |
1,5-3,0 |
Stylosantes |
20-40 |
1,5-3,0 |
10-30 |
5-20 |
1,5-4,0 |
1,5-3,0 |
Guandu |
20-40 |
1,5-3,0 |
12-30 |
5-20 |
2,0-5,0 |
1,5-3,0 |
Alfafa |
34-56 |
2,5-5,0 |
20-35 |
10-25 |
3,0-8,0 |
2,0-4,0 |
Fontes: 1Casale (199), 2Raij & Cantarela (1966), 3Adaptado de Quaggio (1996), 4Natale et al. (1996), 5Raij & Cantarela (1966),6Werner et al. (1996).
Faixa de teores adequados de micronutrientes para algumas culturas |
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Cultura |
B |
Cu |
Fe |
Mn |
Mo |
Zn |
---------------------------- mg.kg-1 ---------------------------- |
||||||
Café1 |
50-80 |
10-20 |
50-200 |
50-200 |
0,1-2,0 |
10-20 |
Citros2 |
36-100 |
4-10 |
50-120 |
35-300 |
0,1-1,0 |
25-100 |
Manga3 |
70-100 |
>10 |
>50 |
>50 |
- |
30-50 |
Goiaba4 |
20-25 |
10-40 |
50-150 |
180-250 |
- |
25-35 |
Cana de açúcar5 |
10-30 |
6-15 |
40-250 |
25-250 |
0,05-0,2 |
10-50 |
Colonião |
10-30 |
4-14 |
50-200 |
40-200 |
- |
20-50 |
Napier |
10-25 |
4-17 |
50-200 |
40-200 |
- |
20-50 |
Coast-cross |
10-25 |
4-14 |
50-200 |
40-200 |
- |
30-50 |
Tifton |
5-30 |
4-20 |
50-200 |
20-300 |
- |
15-70 |
B. Brizantha |
10-25 |
4-12 |
50-250 |
40-250 |
- |
20-50 |
Andropogon |
10-20 |
4-12 |
50-250 |
40-250 |
- |
20-50 |
B. decumbens |
10-25 |
4-12 |
50-250 |
40-250 |
- |
20-50 |
Batatais |
10-25 |
4-12 |
50-250 |
40-250 |
- |
20-50 |
Gordura |
10-25 |
4-12 |
50-250 |
40-250 |
- |
20-50 |
Soja perene |
30-50 |
5-12 |
40-250 |
40-150 |
- |
20-50 |
Leucena |
25-50 |
5-12 |
40-250 |
40-150 |
- |
20-50 |
Stylosantes |
25-50 |
6-12 |
40-250 |
40-200 |
- |
20-50 |
Guandu |
20-50 |
6-12 |
40-200 |
40-200 |
- |
25-50 |
Alfafa |
30-60 |
8-20 |
40-250 |
40-100 |
- |
30-50 |
Fontes: 1Casale (199), 2Raij & Cantarela (1966), 3Adaptado de Quaggio (1996), 4Natale et al. (1996), 5Raij & Cantarela (1966),6Werner et al. (1996).
FERTILIZANTE SÓLIDO E CORRETIVO |
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A amostra precisa ser bem homogênea para que o produto seja representativo. |
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Procedimentos para coleta de amostrasa) Produtos ensacados: |
Tamanho do lote |
Nº mínimo de sacos amostrados |
Até 10 |
totalidade |
11 a 50 |
10 |
51 a 100 |
20 |
superior a 100 até 2000 |
20 mais 2% da totalidade |
Quando o lote for superior a 2000 sacos, dividir em lotes de 2000 sacos, ou fração.
b) Produtos a granel: |
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Sonda para amostragem de corretivos agrícolas |
Procedimento da amostragem de produto ensacado |
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Procedimentos para preparo da amostrasAs porções de amostra coletadas deverão ser colocadas em recipiente limpo e seco, e homogeneizadas convenientemente, após o que será quarteada, visando obter quatro partes homogêneas da amostra, de aproximadamente 250g. A quarteação pode ser realizada de duas maneiras: manualmente ou por quarteador tipo Jones. |
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